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酶的提取
胞外酶可以直接進(jìn)行提取分離;胞內(nèi)游離存在的“離酶”以及與顆粒體(如細(xì)胞核、線粒體、微粒體、質(zhì)膜)結(jié)合的“結(jié)酶”都有一個(gè)破碎細(xì)胞過程,“結(jié)酶”還有一個(gè)轉(zhuǎn)變成水溶液的問題。因此對(duì)酶類的提取要采用多種方法,常用的細(xì)胞破碎法如下:
機(jī)械法:如絞碎、刨碎、勻漿、研磨、擠壓或超聲波等。研磨時(shí)還可加入細(xì)砂、石英粉、氧化鋁等以利細(xì)胞破碎。
化學(xué)法:用鹽、堿、表面活性劑、EDTA、丙酮和正丁醇等可使細(xì)胞破碎、顆粒體結(jié)構(gòu)解體,從而把酶釋放出來(lái)。例如常將胰臟用數(shù)倍量丙酮處理2~3次,制成丙酮粉供多種酶的提取用;用膽酸鹽處理膜結(jié)構(gòu)上的脂蛋白和“結(jié)酶”,使兩者形成復(fù)合物,并帶上靜電荷,由于電荷之間的排斥作用,使膜破裂,達(dá)到溶解。
酶解法:用組織自溶或用溶菌酶、脫氧核糖核酸酶、磷脂酶等降解細(xì)胞膜結(jié)構(gòu),然后再進(jìn)行提取。但應(yīng)知道組織自溶法對(duì)某些酶的提取是不利的,如胰蛋白是以酶原形式純化后再激活成胰蛋白酶的,若用自溶法提取,酶原已轉(zhuǎn)成酶,純化就很困難。而用純的工具酶降解法是無(wú)此缺點(diǎn),但成本較高。
凍融法:采用反復(fù)冷凍與融化時(shí)由于細(xì)胞中形成了冰晶及剩余液體中鹽濃度的增高可以使細(xì)胞破裂。
酶的提取溶劑可以用水、一定濃度的乙醇、乙二醇、丁醇和稀鹽溶液、緩沖溶液等;也可以用稀堿或稀酸溶液,如用稀硫酸提取胰蛋白酶,用稀鹽酸提取胃蛋白酶。溶劑用量一般為原料重量的1~5倍。攪拌可加速提取,但轉(zhuǎn)速不宜太快,否則會(huì)產(chǎn)生泡沫而難以過濾或使酶變性。多數(shù)酶的提取要在50C以下操作,但有的酶在較高溫度下提取更好,如胃蛋白酶在450C提得收率較高,一般可在一5~+400C間適當(dāng)選擇。提取液的pH應(yīng)在酶的穩(wěn)定pH范圍內(nèi),并應(yīng)遠(yuǎn)離其等電點(diǎn)的pH為宜,如蛋白酶選用pH2.5~3,0,胰蛋白酶和α一糜蛋白酶則用0.25 N硫酸提取。若在中性或堿性提取時(shí),最常用的是0.15 mol/L氯化鈉、0.02~0.05mol/L磷酸緩沖液、0.02-0.05mol/L焦磷酸緩沖液。正丁醇的親脂性強(qiáng),能透入酶的脂質(zhì)結(jié)合物中,又兼有親水性,有類似表面活性劑的作用,適用于提取“結(jié)酶”。
為了減少提取液體積,可用多段逆流提取或柱型抽提法。液渣分離可用過濾法(如板框壓濾、旋轉(zhuǎn)真空過濾)或離心法。過濾時(shí)可加硅藻土、紙漿等為助濾劑。離心時(shí)可加入氫氧化鋁凝膠、磷酸鈣凝膠等以除去懸浮的膠體物質(zhì)。
雜質(zhì)的去除
酶提取液中常含有雜蛋白、多糖、脂類及核酸等雜質(zhì),可用下述方法去除:
調(diào)PH和加熱法:利用蛋白質(zhì)對(duì)酸、堿和熱變性方面性質(zhì)的差異,可去除非活性雜蛋白。如制備脂肪酶時(shí),在pH3、4時(shí)以400C溫度加熱150 min,淀粉酶活力可喪失90%而被除去,而脂肪酶活力仍保持80%以上。
蛋白質(zhì)表面變性法:蛋白質(zhì)表面變性后其性質(zhì)有所不同,借以去除雜蛋白。如制備過氧化氫酶時(shí),加入氯仿和乙醇進(jìn)行振蕩可以將雜蛋白變性而去除。
蛋白質(zhì)沉淀劑法:利用醋酸鋁、利凡諾、單寧酸、離子型表 面活性劑等蛋白質(zhì)沉淀劑可以去除雜蛋白及粘多糖類雜質(zhì)。使用時(shí)要注意這類試劑常可引起酶變性失活,因此應(yīng)迅速除去。
選擇性變性法:各種蛋白質(zhì)對(duì)變性劑的穩(wěn)定性不同,可以用選擇性變性劑去除雜蛋白。如細(xì)胞色素丙對(duì)三氯醋酸較穩(wěn)定,所以在制備時(shí)可用2.5%三氯醋酸使其他雜蛋白變性使沉淀除去。
加保護(hù)劑熱變性法:酶與底物或競(jìng)爭(zhēng)性抑制劑結(jié)合后,其穩(wěn)定性常顯著增加。所以常用它們?yōu)楸Wo(hù)劑,再用一些劇烈手段破壞雜蛋白,如用D-甲基苯甲酸為D-氨基酸氧化酶的保護(hù)劑,經(jīng)加熱除去雜蛋白,使該酶得到很好的提純。
核酸沉淀劑法:酶液中的核酸類雜質(zhì),可以用氯化錳、魚精蛋白硫酸鹽等沉淀劑使其沉淀而除去。必要時(shí),也可用核糖核酶將核酸降解后除去。
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